Nucleosome Positioning and Organization 02-‑715 ¡Advanced ¡Topics ¡in ¡Computa8onal ¡ Genomics ¡
Nucleosome Core
Nucleosome Core and Linker • 147 ¡bp ¡DNA ¡wrapping ¡ around ¡nucleosome ¡core ¡ • Varying ¡lengths ¡of ¡linkers ¡ between ¡adjacent ¡cores ¡ Linker ¡
Nucleosome Positions • Nucleosome ¡posi8ons ¡are ¡non-‑random ¡and ¡conserved ¡across ¡the ¡ similar ¡cell ¡types ¡ • Nucleosome ¡posi8oning ¡affects ¡gene ¡regula8on ¡ • The ¡binding ¡of ¡other ¡proteins ¡affect ¡the ¡posi8ons ¡of ¡nucleosomes ¡ • Dynamic ¡nature ¡of ¡nucleosome ¡posi8oning ¡influenced ¡by ¡the ¡ dynamic ¡gene ¡regula8on ¡ • Sta8c ¡nature ¡of ¡nucleosome ¡posi8oning ¡influenced ¡by ¡DNA ¡ sequence ¡
Dynamic Nucleosomes • Kine8c ¡measurements ¡ show ¡the ¡DNA ¡in ¡an ¡ isolated ¡nucleosome ¡is ¡ surprisingly ¡dynamic, ¡ rapidly ¡uncoiling ¡and ¡ then ¡rewrapping ¡around ¡ its ¡nucleosome ¡core. ¡ • This ¡way, ¡most ¡of ¡ nucleosome-‑bound ¡DNA ¡ sequence ¡is ¡accessible ¡to ¡ other ¡DNA-‑binding ¡ proteins ¡
Dynamic Nucleosomes • DNA ¡in ¡an ¡isolated ¡nucleosome ¡unwraps ¡around ¡four ¡8mes ¡ per ¡second, ¡remaining ¡exposed ¡for ¡10-‑50 ¡milliseconds ¡before ¡ the ¡DNA ¡re-‑wraps ¡around ¡the ¡nucleosome ¡ – Allows ¡for ¡other ¡DNA-‑binding ¡proteins ¡to ¡access ¡the ¡DNA ¡for ¡ transcrip8on, ¡DNA ¡replica8on, ¡etc. ¡ ¡
Dynamic Nucleosomes: Chromatin Remodeling Complex • Nucleosome ¡sliding ¡ – ATP-‑dependent ¡chroma8n ¡remodeling ¡complexes ¡ bind ¡to ¡nucleosome ¡ core ¡proteins ¡and ¡DNA ¡that ¡wraps ¡around ¡it, ¡and ¡use ¡the ¡energy ¡of ¡ATP ¡ hydrolysis ¡to ¡move ¡DNA ¡rela8ve ¡to ¡the ¡core. ¡
Dynamic Nucleosomes: Chromatin Remodeling Complex • Chroma8n ¡remodeling ¡complex ¡replacing ¡histone ¡proteins ¡ with ¡other ¡variants ¡
Dynamic Nucleosomes: Chromatin Remodeling Complex • Chroma8n ¡remodeling ¡complex ¡(with ¡histone ¡chaperones) ¡ replacing/removing ¡histone ¡proteins ¡with ¡other ¡variants ¡
Dynamic Nucleosomes: Chromatin Remodeling Complex • As ¡genes ¡are ¡turned ¡on ¡and ¡off, ¡chroma8n ¡remodeling ¡ complex ¡are ¡brought ¡to ¡specific ¡regions ¡of ¡DNA ¡to ¡locally ¡ influence ¡chroma8n ¡structure ¡ • Certain ¡chroma8n ¡structure ¡can ¡be ¡inherited ¡during ¡cell ¡ division ¡
Dynamic Nucleosomes: Chromatin Remodeling with Code Reader-Writer Complex • Spreading ¡chroma8n ¡ changes ¡ – Gene ¡regulatory ¡protein ¡ recruits ¡a ¡code-‑writer ¡ enzyme, ¡which ¡modifies ¡ the ¡histone ¡code ¡ – The ¡code-‑writer ¡recruits ¡ code-‑reader, ¡which ¡then ¡ again ¡recruits ¡code-‑writer. ¡ – Reader ¡and ¡writer ¡should ¡ recognize ¡the ¡same ¡code ¡ • Barrier ¡DNA ¡sequence ¡for ¡ blocking ¡the ¡long-‑range ¡ spreading ¡ ¡
Dynamic Nucleosomes: Chromatin Remodeling Complex • Spreading ¡wave ¡of ¡chroma8n ¡condensa8on ¡to ¡form ¡a ¡long ¡ range ¡heterochroma8n ¡
Nucleosomes and Chromatin Structure • H3 ¡variant ¡histone, ¡called ¡CENP-‑A ¡replaces ¡H3 ¡in ¡centromeric ¡ DNA ¡sequences ¡
Definitions of Terminology • Nucleosome ¡posi8ons: ¡the ¡nucleosome ¡start/center/end ¡ posi8ons ¡of ¡the ¡147bp ¡sequence ¡wrapped ¡around ¡a ¡ nucleosome ¡ • Nucleosome ¡configura8on ¡ – a ¡set ¡of ¡non-‑overlapping ¡nucleosome ¡posi8ons ¡on ¡a ¡single ¡DNA ¡ molecule ¡of ¡defined ¡length. ¡ – if ¡a ¡base ¡pair ¡is ¡in ¡state ¡1, ¡then ¡both ¡the ¡preceding ¡and ¡following ¡146 ¡ base ¡pairs ¡(bp) ¡must ¡be ¡‘0’ ¡
Definitions of Terminology • Nucleosome ¡organiza8on: ¡a ¡probability ¡distribu8on ¡over ¡ nucleosome ¡configura8ons ¡ – P: ¡nucleosome ¡organiza8on ¡ – C: ¡a ¡set ¡of ¡nucleosome ¡configura8ons ¡ – P(c): ¡the ¡probability ¡of ¡a ¡nucleosome ¡configura8on ¡c ¡
Definitions of Terminology • Nucleosome ¡occupancy: ¡the ¡sum ¡of ¡the ¡probabili8es ¡of ¡the ¡ configura8ons ¡in ¡which ¡the ¡base ¡pair ¡is ¡covered ¡by ¡a ¡ nucleosome ¡ – Occ(x): ¡the ¡occupancy ¡at ¡basepair ¡x ¡ – C: ¡nucleosome ¡configura8on ¡ – P(c): ¡nucleosome ¡organiza8on ¡
Illustration of Different Terminology
Definitions of Terminology • Nucleosome ¡posi8oning: ¡the ¡degree ¡to ¡which ¡the ¡posi8ons ¡of ¡ individual ¡nucleosomes ¡vary ¡across ¡the ¡different ¡ configura8ons ¡of ¡a ¡nucleosome ¡organiza8on. ¡ ¡ – a ¡perfectly ¡posi8oned ¡nucleosome ¡is ¡one ¡that ¡adopts ¡the ¡same ¡ posi8on ¡across ¡all ¡measured ¡configura8ons ¡ – 30% ¡posi8oning? ¡ – Absolute ¡vs. ¡condi8onal ¡posi8oning ¡ ¡
Definitions of Terminology • Absolute ¡nucleosome ¡posi8oning ¡at ¡basepair ¡x: ¡the ¡ probability ¡of ¡a ¡nucleosome ¡star8ng ¡at ¡basepair ¡x ¡ – Absolute ¡nucleosome ¡posi8oning ¡does ¡not ¡uniquely ¡determine ¡ nucleosome ¡organiza8on ¡ ¡ • Condi8onal ¡nucleosome ¡posi8oning ¡at ¡basepair ¡x: ¡the ¡ absolute ¡posi8oning ¡at ¡basepair ¡x ¡divided ¡by ¡the ¡probability ¡ that ¡a ¡nucleosome ¡starts ¡anywhere ¡within ¡a ¡larger ¡region ¡ centered ¡on ¡x ¡ – the ¡probability ¡that ¡a ¡nucleosome ¡starts ¡at ¡ ¡x ¡given ¡that ¡a ¡nucleosome ¡ starts ¡somewhere ¡between ¡ ¡x ¡-‑ ¡73 ¡and ¡ ¡x ¡ ¡+ ¡73 ¡
Illustration of Different Terminology
Experimental Technology for Measuring Nucleosome Organization • Diges8on ¡of ¡chroma8n ¡by ¡micrococcal ¡nuclease ¡(MNase), ¡an ¡ endonuclease ¡that ¡preferen8ally ¡cuts ¡linker ¡DNA ¡rather ¡than ¡ DNA ¡wrapped ¡around ¡a ¡nucleosome ¡ – highly ¡digested ¡DNA: ¡depleted ¡of ¡nucleosomes ¡ – under-‑digested ¡DNA: ¡rela8vely ¡protected ¡by ¡nucleosomes ¡ • Measure ¡the ¡diges8ng ¡paeern ¡with ¡microarray ¡or ¡sequencing ¡ of ¡the ¡nucleosome-‑protected ¡DNA ¡segments ¡ – Occ(x): ¡occupancy ¡at ¡base ¡pair ¡x ¡ – r i : ¡read ¡counts ¡at ¡basepair ¡i ¡
Experimental Technology for Measuring Nucleosome Organization • Challenges ¡ – Bias ¡introduced ¡by ¡MNase’s ¡preference ¡of ¡TA/AT ¡dinucleo8de ¡as ¡its ¡ cleavage ¡site ¡ • Cannot ¡obtain ¡the ¡nucleosome ¡posi8on ¡at ¡a ¡single ¡nucleo8de ¡ resolu8on ¡ • Naked ¡DNA ¡as ¡a ¡control, ¡but ¡linker ¡DNA ¡is ¡TA/AT ¡rich, ¡reducing ¡the ¡ u8lity ¡of ¡naked ¡DNA ¡as ¡a ¡control ¡ – Experiment ¡is ¡performed ¡not ¡on ¡a ¡single ¡cell, ¡but ¡on ¡a ¡popula8on ¡of ¡ cells ¡ • We ¡get ¡to ¡measure ¡only ¡the ¡average ¡of ¡the ¡dynamically ¡changing ¡ nucleosome ¡posi8ons ¡
Experimental Technology for Measuring Nucleosome Organization • Challenges ¡ – In ¡vitro ¡and ¡in ¡vivo ¡nucleosome ¡posi8ons ¡are ¡different ¡ – With ¡low ¡coverage ¡in ¡sequencing, ¡it ¡is ¡difficult ¡to ¡obtain ¡a ¡reliable ¡map ¡ of ¡nucleosome ¡posi8ons. ¡Currently, ¡ ¡ • 2 ¡nucleosome ¡read ¡starts ¡per ¡base ¡pair ¡in ¡a ¡yeast ¡in ¡vivo ¡map ¡ • 0.1-‑2 ¡nucleosome ¡read ¡starts ¡in ¡yeast ¡in ¡vitro ¡map ¡ • 0.07 ¡nucleosome ¡read ¡starts ¡in ¡human ¡in ¡vivo ¡map ¡
Experimental Technology for Measuring Nucleosome Organization • Robustness ¡of ¡nucleosome ¡map: ¡Are ¡the ¡two ¡independently ¡ generated ¡nucleosome ¡maps ¡highly ¡correlated? ¡
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